Категория: Инструкции
Процесс уничтожения организмов, которые могут вызывать заболевания, называют стерилизацией, а оборудование для стерилизации позволяет достичь 100% результата стерильности материала. Средства, которые имеют спороцидное действие, считаются стерилизующими. К разряду критических можно отнести медицинские изделия, имеющие контакт с физиологическими жидкостями пациента (кровь, лимфа), растворами для инъекций или со стерильными тканями. Эти изделия нуждаются в стерилизации после каждого использования потому, что они имеют опасность инфицирования. В стерилизации также нуждаются спецодежда, перевязочные материалы, медицинские инструменты.
Методы стерилизацииВ медицинских учреждениях разрешены несколько методов стерилизации. Их можно разделить на физические и химические. К первому виду относятся паровая, воздушная стерилизация и инфракрасное излучение. При физических методах стерилизации используют высокие температуры от 121 градусов Цельсия, что является неподходящим для большинства медицинских приборов и инструментов. Это и стало основанием для распространения низкотемпературных (химических) методов стерилизации: газового. жидкостного и плазменного. Жидкостную стерилизацию проводят с помощью химических растворов. Такая стерилизация имеет два преимущества: возможность обрабатывать материалы из термочувствительных материалов и низкая цена, по сравнению с другими известными методами. Существует два вида газовой стерилизации – этиленоксидный и формальдегидный. Такую стерилизацию проводят в стационарных установках.
Газовая стерилизацияОдним из самих популярных и необходимых веществ при стерилизации считается оксид этилена. Главным плюсом газовой стерилизации с помощью этиленоксида считается невысокий температурный режим, который позволяет обрабатывать оптику, пластиковые и полимерные изделия. До начала работы необходимые медицинские изделия необходимо подготовить, высушить и упаковать. После этого их помещают в газовую камеру, герметично закрывают и подают газ.
Стерилизация формальдегидомНизкую проникающую способность имеет формальдегид, поэтому он больше подходит для дезинфекции, нежели для стерилизации. При использовании формальдегида температура не должна бить ниже 80°С. Именно этот факт ставит под сомнение использование этого метода как низкотемпературного. Инструменты с отверстиями и каналами нельзя обрабатывать парами формальдегида. Недостатками химических методов стерилизации считается высокая токсичность и необходимость длительной вентиляции стерильных изделий.
Плазменный методСамим современным и наиболее распространённым методом стерилизации на сегодняшний день является плазменный метод, при использовании которого создается биоцидная среда на основе водного раствора пероксида водорода и низкотемпературной плазмы. Этот метод позволяет стерилизовать любые изделия: от обычных инструментов до электроприборов и изделий, чувствительных к влаге. В то же время, плазменной стерилизации не подлежат перевязочные материалы, спецодежда и белье. В вакуумную камеру помещают медицинские изделия. Далее, под воздействием электромагнитного излучения паров пероксида водорода образуется плазма и ультрафиолетовое излучение. При плазменном методе стерилизации используют невысокие температуры – 36-60°С. Сам процесс стерилизации длится от 35 минут. Для большинства медицинских учреждений плазменные стерилизаторы являются очень дорогими.
Виды оборудования для стерилизации
Для таких изделий как эндоскопы, катетеры и хирургически инструменты стерилизация осуществляется при помощи автоклавов и инфракрасных шкафов. Для обработки медицинской одежды, перчаток и материалов для перевязки широко используют автоклав. Очень удобными в использовании являются сухожаровые шкафы. После обработки в них инструменты остаются сухими. Сейчас популярностью пользуются автоматические стерилизаторы. Они оснащены специальным микропроцессором с программами, которые всегда можно перепрограммировать под себя. Оборудование для стерилизации бывает встроенным в стену или свободной установки. Размеры их тоже бывают разные: от 10 до 100 литров.
Все вопросы по поводу статьи Вы можете писать ниже в комментариях.
Читайте также:Главное отличия фетальных кардиомониторов от других устройств
Дезинфекция и Стерилизация
ДезинфекцияДезинфекция (фр. des. – от, и позднелат. infectio - заражение), методы и средства уничтожения болезнетворных микроорганизмов на путях передачи от источника инфекции к здоровому организму. Основная задача дезинфекции - прерывание механизма передачи инфекции обеззараживанием различных объектов (вода, поверхности объектов, пищевые продукты, предметы бытовой обстановки и др.).
Таким образом, дезинфекция - это уничтожение не всей микрофлоры, населяющей обрабатываемый объект, а только болезнетворных микробов. При этом подразумевается, что безвредная микрофлора выживает. Такое разделение основано на том, что микроорганизмы, вызывающие заболевания (т.е. патогенные микроорганизмы), значительно менее устойчивы к воздействию внешних факторов, поскольку эволюционно привыкли к комфортному проживанию в организмах теплокровных животных и человека и в связи с этим утратили многие защитные качества, присущие "диким" микробам, вынужденным постоянно бороться за свое существование в жестких условиях внешней среды.
В то же время, это - очень условное разделение, потому как некоторые патогенные микроорганизмы обладают свойством спорообразования, т.е. в неблагоприятные времена покрываются защитной оболочкой и приостанавливают свою жизнедеятельность до лучших времен. В состоянии споры они могут переживать в неблагоприятной среде многие годы и даже десятилетия, активизируясь, как только попадают в комфортные для себя условия. Яркий пример - сибирская язва, споры которой без труда переносят замораживание, высушивание, не слишком продолжительное кипячение и способны "ожить" через несколько десятков лет в прекрасном состоянии.
Для дезинфекции используются различные физические, химические и другие методы.
Механические способы дезинфекции. К дезинфекции их можно отнести с большой натяжкой, тем не менее они наиболее просты и доступны. Это подметание, чистка, вытряхивание, мытье всевозможных предметов с частой сменой воды, влажная уборка, проветривание и вентиляция помещений, использование пылесосов для удаления микроорганизмов с различных поверхностей, фильтрация воздуха и воды. Эти способы позволяют только уменьшить количество микробов.
Эффект дезинфекции повышается, если механические способы сочетаются с кипячением или замачиванием в дезрастворах.
Кипячение - простой, доступный и надежный способ обеззараживания предметов, которые не портятся в кипящей воде. Он широко применяется для обеззараживания посуды, плевательниц, суден, белья, полотенец, халатов, остатков пищи. Большинство бактерий погибает в кипящей воде или мгновенно, или в течение 2-5 минут. Некоторые вирусы (гепатит В,С), споры сибирской язвы гибнут только через 60 минут, споры столбняка через 3 часа, а споры возбудителя ботулизма - через 6 часов. Дезинфицирующее действие кипящей воды усиливается, если добавить 2% раствор питьевой соды или мыла.
Нагревание до высокой температуры приводит к гибели всех микроорганизмов, в том числе и споровых форм. Это используется для быстрой дезинфекции металлических предметов в виде прокаливания над пламенем газовой горелки, горящего тампона, смоченного спиртом. Так можно обеззараживать тазы, металлические предметы (ножницы, щипчики, кусачки и т.п.). Огонь используется для сжигания зараженных предметов, не представляющих ценности: макулатура, мусор, тряпье, бинты и т.п.
Ультрафиолетовые лучи (УФЛ) обладают большой бактерицидной способностью. Но использовать ультрафиолетовые лампы необходимо осторожно, потому что ультрафиолетовые лучи могут вызвать болезненные явления - острый коньюнктивит, ожог кожи. Хорошим дезинфицирующим действием обладают солнечные лучи, что зависит главным образом от ультрафиолетовой части их спектра. В солнечные дни целесообразно вывешивать белье больного на улицу.
Химические методы дезинфекции являются основными способами обеззараживания при уходе за больными. В настоящее время рынок переполнен различными отечественными и импортными дезсредствами. Вещества, применяемые для химической дезинфекции, как правило, токсичны. При их использовании необходимо строго соблюдать инструкцию, прилагаемую к препарату.
СтерилизацияСтерилизация (от лат. sterilis - бесплодный) - полное освобождение различных веществ и предметов от живых микроорганизмов. Понятие стерилизации обозначает уничтожение всех способных к размножению микробов. Особенно важно, что при стерилизации уничтожаются также споры. Поэтому однозначным требованием является следующее: все медицинские инструменты и предметы ухода за пациентом, проникающие в стерильные в норме ткани, сосуды, или контактирующие с кровью и инъекционными растворами, считаются "критическими" предметами. К ним, например, относятся: хирургические инструменты, мочевые и сосудистые катетеры, иглы. Критические инструменты представляют высокий риск инфицирования в случае их микробной контаминации. Таким образом, предметы медицинского назначения этой категории должны быть подвергнуты стерилизации.
Большим преимуществом стерилизации, помимо ее действенности, является возможность ее автоматизированного проведения, а также сравнительно непродолжительное время процесса. Однако, следует учитывать, что все методы стерилизации требуют предварительной подготовки изделий, предназначенных для стерилизации (отмывки, сушки и упаковки), а также их транспортировки к стерилизатору. Таким образом, цикл стерилизации складывается из времени подготовки к стерилизации и собственно стерилизационного цикла и составляет обычно 3 – 3,5 часа. Это означает, что при использовании любого из методов стерилизации возможно проведение не больше 3 полных циклов за рабочий день.
Традиционные методы стерилизации.
Самым распространенным в мире способом стерилизации является паровая стерилизация, или автоклавирование. Данный метод высокоэффективен, экономичен и приемлем для большинства медицинских изделий. По данным статистики, 75% общего объема госпитальной стерилизации в мире приходится на паровой метод.
В Украине все еще широко используется воздушная, или сухожаровая, стерилизация. В развитых странах высокая энергопотребляемость, отсутствие надежных методов упаковки и высокая температура воздействия свели применение данного метода к единичным случаям.
Оба метода используют рабочую температуру рабочего цикла от 121° до 180°С, что вызывает термическое повреждение термочувствительных материалов (пластики, оптика, электронные блоки). Поэтому, в связи с развитием современных медицинских технологий и широким внедрением в практику здравоохранения высокоточных инструментов и сложного дорогостоящего оборудования, возникла необходимость в щадящих низкотемпературных методах стерилизации.
Низкотемпературные методы стерилизации.
В мировой практике встречаются 3 основных метода низкотемпературной стерилизации: газовый этиленоксидный, газовый формальдегидный и плазменный.
Наиболее широко в мире применяется стерилизация с помощью этиленоксида. Для сравнения, в 1999г. в США 52,2% всех одноразовых медицинских изделий было простерилизовано с помощью этиленоксида, 45,5% - гамма-радиацией, 1,8% - паром и только 0,5% - другими методами.
Этиленоксидная стерилизация прекрасно зарекомендовала себя в большинстве стран мира, оборудование для ее проведения выпускается большим количеством производителей в различных странах Европы и Америки.
Этиленоксидный метод обеспечивает самый щадящий температурный режим стерилизации.
2. Газовая стерилизация при помощи формальдегида.
Формальдегид нашел широкое применение в качестве средства для дезинфекции высокого уровня с использованием специальных камер. Для стерилизации же он не является самым удачным выбором. Низкая проникающая способность формальдегида приводит к тому, что данный метод требует применения рабочей температуры в пределах 65 – 80°С, и многие специалисты вообще не считают этот метод низкотемпературным. Для формальдегида имеются существенные ограничения в отношении стерилизации полых изделий, изделий с отверстиями и каналами. Весьма существенно, что для формальдегида не разработано нейтрализаторов и полного мониторинга процесса стерилизации.
Этот метод основан на действии плазмы перекиси водорода (Н2 О2). Плазма - четвертое состояние вещества (в отличие от твердого, жидкого и газообразного). Она состоит из ионов, электронов, нейтральных атомов и молекул и образуется под действием внешних источников энергии, таких как температура, радиационное излучение, электрическое поле и др. При этом методе после впрыскивания раствора перекиси водорода в стерилизационную камеру включается источник электромагнитного излучения частотой 13,56 Мгц, под воздействием которого одновременно происходит деление одной части молекул Н2 О2 на две группы (ОН-), а другой части - на одну гидропероксильную группу (ООН-) и один атом водорода, сопровождающееся выделением видимого и ультрафиолетового излучения. В результате создается биоцидная среда, состоящая из молекул перекиси водорода, свободных радикалов и ультрафиолетового излучения. При отключении электромагнитного поля свободные радикалы преобразуются в молекулы воды и кислорода, не оставляя никаких токсичных отходов.
Преимущества и недостатки различных методов стерилизации
Преимущество химических методов стерилизации – возможность уничтожения спор микроорганизмов. Основной их недостаток – токсичность используемых веществ.
Стерилизация озоном основана на его высокой окислительной способности. Озон уже много лет используется для обеззараживания питьевой воды и воздуха. Недавно его начали применять для стерилизации в медицине. Специальные генераторы производят озоно-воздушную смесь из атмосферного воздуха.
Однако главное преимущество озона – его окислительная способность – является одновременно и недостатком. В больших количествах этот газ разъедает сталь, медь, резину. Озон в высоких концентрациях ядовит и для человека. Это качество заметно ограничивает его применение.
Методы контроля стерилизации
Физический метод включает контроль температуры и времени стерилизации. Время обработки измеряют по часам. Температуру отслеживают по приборам самого автоклава, либо устанавливают дополнительные термометры во внутренней камере аппарата.
Химический контроль осуществляют с помощью индикаторов. Раньше применялись индикаторы плавления (тиомочевина, бензойная кислота), но они вышли из употребления. Современные индикаторы имеют вид полосок, которые закладывают в автоклав. Они изменяют окраску только под действием температуры стерилизации в течение требуемого времени.
При бактериологическом контроле проверяют гибель спор тест-культур, помещенных в автоклав.
Источники: practice. biotechnolog. ru. medn .ru, avinpharma.ru, steriliz.narod.ru, pandia.ru, aquaexpert.ru
Изобретение относится к медицине, а именно к способам стерилизации эндоскопической аппаратуры. Эндоскопическую аппаратуру стерилизуют в газовой среде, полученной испарением 17 – 25% раствора формальдегида в воде. Обработку проводят при 40 – 45єС в течение 60 – 95 минут в термостате. Способ позволяет проводить эффективную стерилизацию эндоскопической аппаратуры с сокращением времени ее обработки. 4 табл.
Изобретение относится к медицине, а именно к способам стерилизации эндоскопической аппаратуры.
В настоящее время широкое распространение в диагностике и лечении различных заболеваний получили малоинвазивные методы исследования с помощью эндоскопической техники. Безопасность методики выполнения, малая травматичность, значительное сокращение послеоперационного периода и, как следствие, экономическая эффективность привели к резкому росту удельного веса этих вмешательств. Поэтому с развитием эндоскопических методов диагностики и лечения возникла серьезная проблема обеззараживания и стерилизации термолабильных инструментов и оборудования. Эта проблема адекватной и недолговременной высокоуровневой дезинфекции и стерилизации эндоскопического оборудования и изделий из световолоконной оптики приобретает все большую актуальность. Это связано как с высокой стоимостью аппаратуры, ограниченным ее количеством, необходимостью многократного ежедневного использования, гарантией микробной безопасности при относительно недорогих дезинфектантах, так и ростом частоты вирусного гепатита В, внутрибольничных инфекций (ВБИ), в частности генерализованного хеликобактериоза. Выходом из создавшейся ситуации является поиск, апробация в практических условиях и внедрение в практику альтернативных низкотемпературных методов стерилизации.
Актуальность изучения газового способа стерилизации эндоскопической аппаратуры высока в связи с отсутствием эффективных методов и полученных четких доказательств ятрогенной передачи инфекционных агентов при процедуре эндоскопии. Весьма велико число ВБИ, передаваемых ятрогенным путем: гепатиты В, С, Д, ВИЧ-инфекция, сифилис, листериоз, токсоплазмоз, стафилококковая и стрептококковая инфекция, герпес и другие. В литературе описана передача таких микроорганизмов, как Klebsiella spp. Enterobacter spp. H. pylori, Pseudomonas spp. и др. (Ковалева Е.П. Семина Н.А. Храпунова И.А. Матвеев С.И. “Артифициальный механизм передачи возбудителей вирусных гепатитов.” Центральный НИИ эпидемиологии Минздрава РФ, Центр Госсанэпиднадзора в Москве. -“Эпидемиология и инфекционные болезни” - №2, 2000 г.). Один из путей возможной контаминации при эндоскопическом исследовании - через непосредственные контакты при осуществлении эндоскопии. Недостатки дезинфекции и стерилизации приводят к сохранению микроорганизмов на эндоскопическом инструментарии, и, в конечном счете, к инфицированию пациента. По уровню необходимой обработки и стерилизации инструментария и оборудования, используемого в медицине, выделено 3 группы, что обусловлено областью его применения: стерильность имеет критическое значение, стерильность важна, стерильность не имеет особого значения. Гибкие эндоскопы определены как объекты, которые входят в среднюю группу, требующую высокого уровня дезинфекции, что означает уничтожение всех микроорганизмов, включая бактериальные споры (Ивашкин В.Т. Мегро Ф. Лапина Т.Л. - “Helicobacter pylori: революция в гастроэнтерологии”, - “Триада - X”, - Москва, 1999 г. 255 стр.).
Однако с развитием эндоскопических методов диагностики и лечения возникла серьезная проблема обеззараживания и стерилизации термолабильных инструментов и оборудования. Применяемые в лечебно-профилактических учреждениях методы стерилизации эндоскопических инструментов с помощью растворов химических соединений (6% перекись водорода, 2,5% раствор глютарового альдегида), малоприемлемы для этих целей, сопряжены с большими трудностями при их использовании, так как предстерилизационная очистка и стерилизация занимают длительное время - от 6 до 12 часов, вместе с тем, высокие концентрации могут оказывать повреждающее действие на обрабатываемые материалы и негативное воздействие на кожу и слизистые оболочки персонала. Инструменты, подвергаемые стерилизации химическими растворами, со временем коррозируются, часто повреждаются оптические линзы. Помещение, в котором проводится стерилизация растворами химических соединений, должно быть оборудовано по типу бактериологического бокса, стерилизация должна проводиться в специальных емкостях с полным погружением изделий в раствор, с заполнением каналов и полостей.
В современных условиях существует насущная потребность в поиске эффективного и относительно безопасного метода дезинфекции и стерилизации эндоскопической аппаратуры, в сохранности дорогостоящей аппаратуры, увеличении срока ее службы, апробации в практических условиях и внедрении в практику альтернативных низкотемпературных методов стерилизации, что и является целью нашей работы.
Известен способ очистки и стерилизации эндоскопов жидкими моюще-стерилизующими растворами (Заявка РФ на изобретение №96117862/13, М. кл. 6 А 61 L 2/18 Паничева С.А. Бахир В.М. Задорожный Ю.Г. БИ №31, 10.11.98 г. стр. 45-46.) Очистка и стерилизация эндоскопов проводится в электрохимической камере. Установка содержит устройство для фиксации эндоскопа, снабженное приспособлениями для подачи к внешним и внутренним поверхностям эндоскопа моюще-стерилизующих растворов и приспособлениями для слива отработанных растворов, узел приготовления моюще-стерилизующих растворов из исходного водного раствора реагента, содержащего хлорид натрия. Метод включает трехстадийную обработку эндоскопов тремя моюще-стерилизующими растворами разного состава, который последовательно обрабатывают в электродных камерах диафрагменного электролизера. Моюще-стерилизующие растворы готовят обработкой исходного раствора хлорида натрия последовательно в катодной и анодной камерах с использованием нерастворимых электродов и керамической диафрагмы.
Недостатками способа являются его техническая сложность (наличие нерастворимых электродов, катализаторов), нужны большие материальные затраты для его осуществления. Узлы установки и вспомогательное оборудование должны быть смонтированны на стационарной или передвижной основе и снабжены средствами обеспечения подвода водопроводной воды, электроэнергии и отвода отработанных жидких средств. В практическом здравоохранении способ неосуществим.
Известны методические рекомендации по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации медицинских инструментов к гибким эндоскопам, утвержденные Начальником Главного управления карантинных инфекций Министерства здравоохранения СССР М.Н. Наркевичем 09.02.88 г. №28 6/3. Стерилизацию инструментов проводят 2,5% раствором глутарового альдегида или парами раствора формальдегида в этиловом спирте в дозе 150 мг/дм 3. Стерилизацию проводят в портативном аппарате, приспособленном для этой цели: микроанаэростате МИ объемом 2,7 дм 3 или скороварке “Минутка” объемом 6 дм 3. при температуре 45±5 С и относительной влажности 90-100%. Время стерилизационной выдержки инструментов - 3,5 часа.
Недостатками способа являются наличие этилового спирта усиливает раздражающее действие паров формалина на слизистую глаз, носа, дыхательных путей, вызывая слезотечение, чихания, першение в горле, кашель, это свидетельствует о явном превышении ПДК (для формальдегида в этиловом спирте - 0,5 мг/м по формальдегиду) и необходимость оборудования в эндоскопических отделениях ЛПУ помещений, оборудованных приточно-вытяжной вентиляцией. Так как раствор формальдегида в этиловом спирте относится к умеренно опасным веществам с выраженными раздражающими и сенсибилизирующими свойствами (ГОСТ 12.1.007-76 “Система стандартов безопасности труда. Вредные вещества. Классификация и общие требования безопасности”.) Недостатком способа является и переоборудование скороварки, что требует дополнительных затрат.
Наиболее близким к заявляемому техническому решению является способ газовой стерилизации эндоскопического оборудования смесью паров воды и формальдегида, которая осуществляется на основании ОСТа 42-21-2-85 “Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы.” Стерилизацию проводят в стационарном формалиновом стерилизаторе 16% водным раствором формалина при температуре 75±5 С. Время стерилизационной выдержки 300±5 минут.
Основной недостаток данного способа в том, что предстерилизационная очистка и стерилизация занимают длительное время и происходит губительное воздействие высокой температуры на структуру термолабильного эндоскопического оборудования.
Задача предлагаемого способа химической стерилизации эндоскопической аппаратуры заключается в создании эффективного метода стерилизации эндоскопической аппаратуры, сокращение времени обработки. Стерилизацию можно определить как комплекс мероприятий по удалению микроорганизмов с поверхности изделий с последующим их полным уничтожением. Достоинством этого метода является повсеместная доступность, легкость исполнения, экономичность, возможность повторного использования за смену эндоскопической аппаратуры.
Поставленная задача достигается тем, что стерилизация эндоскопического оборудования проводится в газовой среде 17-25% водного раствора формальдегида при температуре 40-45 С в течение 60-95 минут в термостате.
1. Используют 17-25% раствор формальдегида в воде.
2. Температура 40-45 С, которая является наиболее оптимальной для термолабильного оборудования.
3. Время стерилизационной выдержки 60-95 минут.
Сущность способа заключается в следующем.
В комплексе противоэпидемических мероприятий, направленных на исключение парентерального механизма инфицирования, большая роль принадлежит правильности организации и выполнению предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения, от качества которой зависит эффективность стерилизации.
После использования эндоскопическую аппаратуру подвергают дезинфекции.
Дезинфекция имеет целью уничтожение патогенных микроорганизмов.
Перед обработкой необходимо разобрать инструменты, имеющие узкие щели, каналы, соединения, чтобы обеспечить доступ дезинфицирующих агентов ко всем поверхностям изделий.
Ополаскивают водой от остатков на инструментах кровяных, гнойных, лекарственных и других загрязнений.
Замачивают в моющем и дезинфецирующим растворе при полном погружении и заполнении внутренних каналов.
Сразу же после обеззараживания с инструментов с помощью щетки или ватно-марлевого тампона удаляют загрязнения.
Инструменты промывают под струей теплой водопроводной воды и высушивают до полного удаления влаги.
Стерилизацию парами 17-25% водного раствора формальдегида проводят в электрическом суховоздушном термостате типа ТМ-80М-2 с автоматическим поддержанием заданной температуры 40-45 С.
Готовим водный раствор формалина с содержанием формальдегида 17%. Расчет количества формалина, необходимого для приготовления 1 дм 3 (л) рабочего раствора проводим с учетом содержания формалина в препарате по формуле (1)
Х - количество формалина, необходимое для приготовления 1дм рабочего раствора, мл;
Y - концентрация рабочего раствора, который требуется приготовить,%;
К - содержание формалина в исходном препарате,%.
Рабочий 17% водный раствор формалина готовим из 40% раствора формальдегида.
Для приготовления 1 дм 3 водного 17% раствора формалина 425 мл исходного раствора препарата разводим в 575 мл стерильной дистиллированной воды. Полученный 17% водный раствор формалина наливаем в чашку Петри в количестве 20,0 мл и помещаем в термостат с открытой крышкой. Аналогично рассчитываем и другие концентрации. Затем в камеру термостата помещаем лоток с эндоскопической аппаратурой, крышку герметично закрываем. Время стерилизационной выдержки 60-95 минут. По окончании стерилизационной выдержки аппаратуру извлекают из термостата.
Режим стерилизации достоверен, и достаточен, и подтвержден бактериологическим контролем. Данные бактериологического контроля приведены в таблице. Таким образом, предлагаемый способ химической стерилизации эндоскопической аппаратуры достаточно эффективен, является более доступным, безопасным, не требующим сложной аппаратуры. Время обработки сокращается в 3-4 раза. При большей концентрации формальдегида (25%) требуется меньшее время. Повышение концентрации формальдегида на аппаратуру не влияет. Более высокие концентрации формальдегида влияют на обслуживающий персонал, оказывая раздражающее действие на слизистые оболочки. Время подобрано опытным путем.
Предлагаемый способ используется в эндоскопическом отделении МГКБ №29.
Проведена выборка историй болезни 80 больных, с эндоскопической холецистэктомией за сентябрь 2000 г. - июль 2001 г. Послеоперационных нагноений не выявлено.
Пример 1. С целью проверки надежности стерилизации колоноскопа, “оболочку” и биопсийный канал аппарата заражали суточными культурами различных микроорганизмов. Перед стерилизацией делали контрольные высевы из канала и с “оболочки” аппарата. Проводили стерилизацию колоноскопа, после его подготовки, парами 16% водного раствора формальдегида. Помещали колоноскоп в термостат и задавали температуру 45 С. Время стерилизационной выдержки 95 минут. Затем проводили повторные высевы. За посевами наблюдаем 8 дней. Если за этот период роста не отмечалось, колоноскоп считали стерильным. Результаты опытов стерилизации представлены в таблице 1.
Как видно из таблицы 1 (строка 10), стерилизация недостаточно эффективна, т.к. после 95 минутной экспозиции колоноскопа в парах 16% раствора формалина высевались два вида микроорганизмов.
Пример 2. Аналогично проводили стерилизацию колоноскопа, после его подготовки, парами 17% водного раствора формальдегида. Помещали колоноскоп в термостат и задавали температуру 45 С. Время стерилизационной выдержки 95 минут. По окончании стерилизации аппарат извлекали из термостата и анализировали на наличие 20 видов микроорганизмов. Стерилизация удовлетворяла требованиям ГОСТа. Микрофлоры не обнаружено. Результаты опытов стерилизации представлены в таблице 2.
Пример 3. Аналогично проводили стерилизацию колоноскопа, после его подготовки, парами 20% водного раствора формальдегида. Помещали колоноскоп в термостат и задавали температуру 40 С. Время стерилизационной выдержки 60 минут. По окончании стерилизации аппарат извлекали из термостата и анализировали на наличие 20 видов микроорганизмов. Стерилизация удовлетворяла требованиям ГОСТа. Микрофлоры не обнаружено. Результаты опытов стерилизации представлены в таблице 3.
Пример 4. Аналогично проводили стерилизацию колоноскопа, после его подготовки, парами 25% водного раствора формальдегида. Помещали колоноскоп в термостат и задавали температуру 40 С. Время стерилизационной выдержки 60 минут. По окончании стерилизации аппарат извлекали из термостата и анализировали на наличие 20 видов микроорганизмов. Стерилизация удовлетворяла требованиям ГОСТа. Микрофлоры не обнаружено. Результаты опытов стерилизации представлены в таблице 4.
ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯСпособ химической стерилизации эндоскопической аппаратуры, включающий стерилизацию в газовой среде, полученной испарением раствора формальдегида в воде, отличающийся тем, что используют 17-25%-ный раствор формальдегида в воде, обработку проводят при 40-45 С в течение 60-95 мин в термостате.
